Д. Смоленская, 1987; Н. С. Жосан, 1988; В. Г. 3ароза, 1989; С. И. Плященко,
В. Т. Сидоров, А. Ф. Трофимов, 1990; Т. Е. Besser, O. Szenci, C. C. Gay,
1990; Ю. Н. Федоров, О. А. Верховский, 1996; F. В. Carry, 1996, также
свидетельствуют о том, что абсорбция иммуноглобулинов молозива происходит
обычно в течение первых 24—36ч жизни животного, постепенно замедляясь к 10-
12 ч возраста вплоть до полного прекращения. Всасывание иммуноглобулинов
происходит в кишечнике, и через лимфатические пути они попадают в кровь.
Иммуноглобулины появляются в лимфе уже через 1-2 ч после поступления их в
двенадцатиперстную кашку животного.
Большое значение молозива в создании иммунитета у новорожденных телят
впервые отметили P. H. Romer, H. Much [1906]. В дальнейшем их данные были
подтверждены исследованиями многочисленных авторов [R. Aschaffenburg, S.
Bartlett, S. K. Kon, P. Terry, S. Y. Thompson and D. M. Walker, 1949a; R.
Aschaffenburg, S. Bartlett, S. K. Kon, D. M. Walker, C. Briggs, E. Cotchin
and R. Lovell, 1949b; R. Aschaffenburg, S. Bartlett, S. K. Kon, J. M. Roy
and D. M. Walker, 1951a; R. Aschaffenburg, S. Bartlett, S. K. Kon, S. Y.
Roy, D. M. Walker C. Briggs and R. Lovell, 1951b; C. Briggs, 1951; E.
Selman, A. D. McEwan and E. W. 1970; P. Blackmer, 1973; V.C.R. Irvin, 1974;
С. В. Вальциферова, 1997; L. Hirszfeld et J Lille-Azyszkowierz, 1979; J. N.
Roy, 1980; И. М. Карпуть, В. М. Холод, 1982; С. С. Gay, 1984; J. J. Geene,
1984; R. Morar, 1985; Г. Н. Печникова, Т. В. Окунева, О. Н. Грызлова, 1988;
И. М. Карпуть, А. Г. Ульянов, В. И. Бабин, 1990; P.E. Howe, 1991; C. Staak,
1992; W. Zaremba, 1993; Т. Е. Besser, C. C. Gay, 1994; P. P. Игнатьев, Г.
Ч. Бондаренко, 1994; F. В. Carry, 1996; Д. Н. Масюк, 1997; L. J. Perino,
1997].
В сыворотке крови новорожденных телят не обнаруживали агглютинины [Th.
Smith and R. B. Little, 1922; Th. Smith and R.B. Little, 1922b; S. C. Whipp
and S. T. Donta, 1976; A. N. Thepfilopoulos, F.J. Dixon, 1979; J. M. Tyler,
J. S. Cullor, M. C. Thurmond, 1989; K. Walser und H. Brumer, 1987] к
кишечной палочке, хотя в сыворотке крови матерей и в молозиве они имелись в
значительном количестве. После поения теленка молозивом в сыворотке его
крови указанные агглютинины появлялись. Более того, молозиво, полученное в
первые часы после отела, в дозе 0,2 мл предохраняло морских свинок от
заражения 1-1,5 минимальными смертельными дозами культуры кишечной палочки.
Авторы пришли к заключению, что кормление телят молозивом имеет огромное
значение в создании невосприимчивости к колиинфекции.
В молозиве коров обнаружен иммунный глобулин, имеющий огромное значение,
как носитель антител, в создании устойчивости новорожденных телят к
инфекционным заболеваниям [H. W. Smith, 1971; H. W. Smith, 1976; H.W.
Smith, 1978] .
Исследования механизмов транспорта и катаболизма иммуноглобулинов in
vitro показало, что в начале всасывания образуется комплекс между
иммуноглобулинами и специфическими рецепторами энтероцитов. Во
взаимодействии с рецепторами клеток кишечника участвует Fc-фрагмент
иммуноглобулинов. Вероятно, связывание иммуноглобулинов с клетками
предохраняет их от катаболизма и способствует транспорту в кровь [D. Eddie,
M. Sohulkind, I. Robbins, 1971; И. И. Головистиков, 1979]. Процесс переноса
наиболее активно идет при рН 6,0-6,5, что соответствует кислотности
жидкости в тонком отделе кишечника новорожденных.
Иммуноглобулины крупного рогатого скота были идентифицированы как
аналоги по физико-химической и антигенной характеристике к человеческим
IgG, IgA и IgM. Два класса IgG: IgG1 и IgG2 иммунологически и биологически
различались. Секреторный IgA был идентифицирован в эпителии слизистой
оболочки кишечника в секреторных компонентах. IgG1 является доминирующим в
молочной секреции, IgM превышает IgA в секреции пищеварительного тракта
преруминантных телят [P. D. Porter, 1973; J. A. Roth, J. W. Sexton, 1975;
R. Sakulramrung, G. L. Domingae, 1985; G. Riedel-Caspari, 1993;] .
IgM и IgA играют важную роль в местной (локальной) реакции вымени при
заражения бактериальными антигенами, а также, вероятно, эти два
иммуноглобулина взаимодействуют в защитном механизме новорожденных телят
[R. A. Wilson and I. W. Jutila, 1976; P. Pivont, R. Gregoire and H.
Antoine, 1984; L. S. Young, 1985; M. L. Wickstrom, 1987].
У новорожденных интестинальная адсорбция колостральных антител не
селективная, таким образом иммуноглобулиновый профиль сыворотки
постколостральных телят имеет сходство с молозивом и это обеспечивает
необыкновенно высокий уровень секреторного IgA в циркуляции крови.
Секреторные IgA и IgM существенно содействуют пассивному иммунитету, хотя
их продолжительность в сыворотке крови телят составляет соответственно
только 2 и 4 дня [G. G. B. Klaus, A. Bennett and E.W. Jones, 1979; R.K.
Braun, B.C. Tennant, 1983; J. Brenner, 1991].
Концентрация иммуноглобулинов в молоке коров снижается быстро в течение
первых 3 дней лактации и, маловероятно, что содействует локальной защите
алиментарного тракта телят после первой недели. Тем не менее, локальный
синтез иммуноглобулинов является доказуемым в иммуноцитах, находящихся на
конце эпителиальных клеток пищеварительного тракта и секреция
иммуноглобулинов начинается на 2-ой неделе жизни [H. Fey, 1967; E. F.
Logan, and W. J. Penhale, 1971; J. E. Butler, C. A. Kiddy, C. Maxwele, M.
B. Hylton, A. Asofsky, 1971; J.W. Boyd, 1972; P. D. Porter, D. E. Noakes,
and W. D. Allen, 1972; E. F. Logan, 1974; В. М. Чекишев, 1977; Ю. Н.
Федоров, И. Д. Фесенко, М. Ю. Горбунова, С. О. Кодыров, И. Ю. Пичкова,
1983; В. М. Чекишев, Т. В. Бондарь, О. А. Колганова, 1985; Т. Е. Besser,
1988].
Эффективность абсорбции лактоглобулинов связана с количеством
проглоченного молозива [I. E. Selman, A. D. McEwan, E. W. Fisher, 1971; Т.
Brignole, J. Stott, 1980; С. С. Gay, Т. McGuire, S. M. Parish 1983;] и
влиянием присутствия коров матерей в течение первых 24 ч жизни [E. Selman,
A. D. McEwan and E. W. 1970; D. F. Wolfe, 1985; Ю. Н. Федоров, О. А.
Верховский, 1996].
В течение двух часов после приема молозива иммуноглобулины появляются в
сыворотке и, через четыре-восемь часов — в синовии. Иммуноглобулиновый
профиль синовии имеет сходство с сывороткой крови телят и коров-матерей [H.
Fey, 1972]. Это объясняет, почему телята, получившие молозиво более
резистентные к септицемии и полиартритам, чем телята, которые недостаточно
получают молозиво.
Молозиво превосходный источник энергии, протеина, витаминов А, Д и
комплекса витаминов В, а также кальция, фосфора, магния и хлоридов. При
дефиците указанных компонентов молозива и, особенно, витамина А
резистентность к Е. coli инфекции резко снижается. [Th. Smith and R. B.
Little, 1922; H. Fey und S. Lindt, 1982; С. С. Gay, 1984; J. J. Geene,
1984; R. Morar, 1985; P.E. Howe, 1991]
Молозиво коров содержит высокий уровень иммуноглобулинов, среди которых
75 % IgG, IgA и IgM вместе составляют около 20 % от иммуноглобулинов
молозива [J. A. Roth, J. W. Sexton, 1975].
По данным исследователей [E. W. Fisher, 1971; J. W. Boyd, 1972; E. W.
Fisher, A. A. Martinez, Z. Trainin, 1975], риск заболеваемости и
летальности можно предсказать у телят 48 ч возраста при определении уровня
сывороточных иммуноглобулинов. Новорожденные телята с уровнем IgG и IgM
меньше чем 0,8 и 0,2 мг/мл соответственно, погибали от неонатальной
септицемии, тогда как у телят с уровнем IgG и IgM 5,0 и 0,6 мг/мл
соответственно, развивалась энтеральная инфекция. Телята с
постколостральным сывороточным уровнем 7,5 и 0,8 мг/мл IgG и IgM
соответственно, были нормальными (клинически здоровы). Следовательно,
телята с умеренно низким уровнем иммуноглобулинов имели достаточный
иммунитет, предупреждающий септицемию, но не профилактировали энтерит.
Многочисленные исследования показывают, что имеется корреляция между
пассивно приобретенными сывороточными иммуноглобулинами и выживанием
неонатальных телят [H. Fey, 1967; H. Fey, 1968; E. F. Logan, A. Stenhouse,
D. J. Ormorod and W. J. Penhale, 1974; T. A. Ferris, J. W. Thomas,1975; R.
K. Braun, B.C. Tennant, 1983; P. Dobbelaar, I. P. T. M. Noordhuizen and K.
Van A. S. Keulen, 1987; A. Lacheretz, J. Chontol, P. Desmettre, 1987].
Определение уровня сывороточного иммуноглобулина у новорожденных
является клинически важным, так как их количество оказывает влияние на
восприимчивость телят к заболеванию. Иммуноглобулиновые фракции составляют
примерно одну третью значения общего сывороточного протеина. Иммуноглобулин
дефицитные телята имеют низкое значение общего протеина, на это указывают
показания рефрактометра. Рефрактометр не дает прямое измерение
сывороточного иммуноглобулина подобно цинк-сульфатному, натрий-сульфитному
и глутаральдегидному тестам, но предусматривает быстрый подсчет уровня
сывороточного иммуноглобулина и может легко применяться в практической
ветеринарии [D. G. McBeath, W. J. Penhale, E. F. Logan,1971; A. D. Me Ewan,
E. W. Fisher, I. E. Selman and W. J. Penhale, 1970; N. E. Pfeiffer, T. C.
McGuire, 1977; N. E. Pfeiffer, T. C. McGuire, R. E. Bendel and J. M Weikel,
1977; B. Tennant, B.H. Baldwin, 1979; H. Frerking, von E. Henkel and E.
Schwartz, 1980; H. Balbierz, M. Nicolaijczuk, J. Zeilinski, 1983]
Объем сыворотки необходимый для рефрактометрического теста очень
незначительный (примерно 0,2-0,3 мл) и если доступно центрифугирование,
оценку концентрации иммуноглобулина, соответствующую требованиям, можно
Страницы: 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20
