новорожденных телят, необходимо отметить, что уровень фагоцитарной
активности и фагоцитарной интенсивности в крови телят в послемолозивный
период статистически достоверно повышался до 5-дневного возраста в
контрольной группе (здоровые) +7,55 и 0,38 (Р<0,001) и в первой опытной
(больные) +2,89 и +0,23 (Р<0,001). Во второй опытной группе (больные-
павшие) не отмечали повышения фагоцитарных показателей.
Значение бактерицидной активности зависит от возраста телят, наиболее
низкий уровень отмечен у новорожденных до приема молозива (21,83±0,55 %).
Достоверное повышение бактерицидной активности установлено у здоровых телят
на 2-, 5-й дни жизни по сравнению с периодом до выпойки молозива. У больных
телят отмечали на 10-й день достоверное снижение бактерицидной активности
по сравнению с 5-дневным возрастом.
Коэффициент корреляции между фагоцитарной и бактерицидной активностью у
больных телят равен 0,81, в 30-дневном возрасте этот показатель был равен
0,74, что указывает на высокую степень взаимосвязи.
Данные изучения комлементарной активности у новорожденных телят
свидетельствуют о том, что этот показатель в контрольной группе (здоровые)
животных возрастает достоверно (Р<0,05) до 30-дневного возраста по
сравнению с периодом до поения молозивом. Так, активность комплемента у
здоровых телят после выпойки молозива увеличилась на 2-, 5-, 10-й дни
соответственно в 1,35, 1,38 и 1,46 раза, в то время как у больных в
аналогичный период это увеличение составило 1,19 , 1,13 и 1,14 раза. У
больных-павших животных на 2-, 5-й дни жизни увеличение равнялось в 1,10 и
1,11 раза.
Следовательно, увеличение комплементарной активности в 1,10 и 1,11 раза
не было адекватным значению комплемента, обеспечивающему сохранность
животных.
Лизоцимная активность у новорожденных телят после поения молозивом
увеличилась у здоровых телят на 2-й день в 2,77 раза, на 5-й день в 2,52
раза и на 10-й в 2,9 раза; у больных животных это увеличение равнялось
соответственно в 1,97, 1,41 и 1,89 раза. Увеличение лизоцимной активности в
1,3 раза на 2-й день и в 1,25 раза на 5-й день во второй опытной группе
(больные-павшие) не предохраняло телят от гибели.
Анализируя показатели пропердиновой активности в сыворотке крови
новорожденных животных после выпойки молозива, необходимо отметить, что
уровень пропердина в сыворотке крови телят увеличился на 2-, 5- 10-й дни
жизни соответственно в 1,41, 1,77 и в 1,71 раза, у больных телят увеличение
пропердиновой активности отмечали в 1,5 раза только в 10-дневном возрасте,
во второй опытной группе (больные-павшие) содержание пропердина в сыворотке
крови на 2-й, 5-й дни после поения молозивом существенно не изменилось:
2,78±0,03 и 2,77±0,025 против 2,93±0,03 ед/мл до поения молозивом.
Данные изучения коррекции иммунодефицита неонатальных телят
свидетельствует о том, что применение ретинола внутримышечно в дозе 100000-
150000 МЕ 1 раз в сутки в течение 2-3 суток и лактоглобулина внутривенно в
дозе 75-80 мл 1 раз в сутки в течение 1-2 суток, обеспечивает
иммунокоррекцию порядка 95,0%, данные подтверждены патентом за №345,
Республики Молдова от 31.12.1995.
Анализируя данные лечения телят, больных колибактериозом, необходимо
отметить, что применение хлорпромазина внутримышечно в форме 2,5 %-ного
раствора в дозе 0,6-0,8 мл на 1 кг живой массы 1 раз в сутки в течение 2-3
суток и Т-активина 0,01 %-ный раствор подкожно в дозе 0,8-1,0 мл ежедневно
в течение 2-3 суток обеспечивает достижение терапевтической эффективности
порядка 93,4 %. Результаты подтверждены патентом за №409, Республики
Молдова от 29.02.1996.
Все это свидетельствует о перспективности использования в
сельскохозяйственном производстве витамина А и лактоглобулина для коррекции
иммунодефицита новорожденных телят, а для лечения колибактериоза телят-
хпорпромазина и Т-активина.
6. ВЫВОДЫ.
1. Колибактериоз новорожденных телят в хозяйствах Республики Молдова
занимает одно из ведущих мест. Протекает остро с признаками диареи,
интоксикации, септицемии, расстройства сердечно-сосудистой и
центральной нервной системы. В возникновении, развитии и исходе
заболевания первостепенную роль играет уровень содержания
иммноглобулинов в крови животных.
2. Концентрация иммунных глобулинов в сыворотке молозива коров первого,
второго и третьего дня лактации составляет соответственно 57,02±0,86
мг/мл; 26,42±0,06 мг/мл и 11,56±0,42 мг/мл. Уровень содержания
иммунных глобулинов в сыворотке крови новорожденных телят через 24 ч
после рождения и в сыворотке молозива коров-матерей первого дня
лактации составляет соответственно 23,096±1,00 мг/мл и 59,00±0,59
мг/мл (контрольная группа); 18,1±0,11 мг/мл и 57,02±0,86 мг/мл
(энтеритная форма колибактериоза); 15,06±0,12 мг/мл и 54,53±0,57
мг/мл (септическая форма колибактериоза).
3. Количественная оценка абсорбции колостральных антител характеризует
иммунный статус новорожденных телят и составляет соответственно
39,21±2,04 % (контрольная группа), 31,78±0,11 % (энтеритная форма
колибактериоза) и 27,0±0,23 % (септическая форма колибактериоза).
Установлена прямая зависимость между концентрацией иммуноглобулинов в
сыворотке крови новорожденных животных и их резистентностью, что
свидетельствует о прямой зависимости клинического статуса от
сывороточной концентрации иммунных глобулинов и их катаболизма.
Увеличение уровня иммуноглобулинов М и А в сыворотке крови клинически
здоровых животных соответственно в 5,74 и 3,44 раза по сравнению с
павшими указывает на их защитную функцию.
4. Концентрация IgG, IgМ и IgА в сыворотке крови коров составляет
соответственно 18,24±0,27 мг/мл, 2,54±0,07 мг/мл и 0,49±0,02 мг/мл.
Количественное содержание иммунных глобулинов в колостральной
сыворотке существенно превалирует по сравнению с сывороткой крови и
равняется IgG 49,5±0,21 мг/мл, IgМ 4,16±0,17 мг/мл, IgА 3,93±0,28
мг/мл. В сыворотке молока уровень иммунных глобулинов значительно
меньший в сравнении с колостральной сывороткой и сывороткой крови
коров, причем содержание IgА (0,13±0,01 мг/мл) в 2,6 раза больше, чем
IgМ (0,05±0,01 мг/мл), что является отличительной особенностью
перераспределения иммуноглобулинов в сыворотке крови и секрете
молочной железы.
5. Содержание иммуноглобулинов в сыворотке крови и копрофильтратах у
телят в зависимости от клинического статуса имеет существенное
различие. Так, уровень катаболизма IgG, IgМ и IgА в группе больных
телят составил соответственно 26,01; 60,00 и 51,69 %, а в группе
павших телят это значение равнялось: 24,86; 12,91 и 69,77 %. Уровень
катаболизма общих иммуноглобулинов в группе больных (выживших) телят
был в 1,12 раза выше, чем в группе больных (павших), а IgМ в 4,64
раза.
6. Активность антител против К-антигенов Е. coli в молозиве и в
сыворотке крови телят 1-2 дневного возраста была низшей, чем
активность против О-антигенов. Титр К-антител в сыворотке крови
неонатальных телят зависит от концентрации К-антител в молозиве
коров. Различная концентрация антител (титр) в сыворотке крови
новорожденных телят против К и О-антигенов Е. coli указывает, что
кормление молозивом может стимулировать или ингибировать синтез
антител к определенным микроорганизмам в одинаковой степени
независимо от места их локализации в бактериальных клетках.
7. «К» антитела-агглютинины молозива коров являются фактором, защищающим
белых мышей против экспериментального колибактериоза, эффективность
проб молозива против определенных серотипов Е. coli можно тестировать
агглютинационным методом. Титр О-антител в сыворотке молозива коров и
в сыворотке крови телят равнялся соответственно: 1:20-1:160 и 1:10-
1:40. При серологической типизации изолированных штаммов Е. coli по К-
антигену, обнаруживали фимбрии К99 и К88ас. Большинство тестированных
сывороток крови телят не содержали К-антитела.
8. Наиболее важным фактором, влияющим на выращивание новорожденных телят
является абсорбция колостральных антител в соответствующем
физиологическом количестве. Иммунизация стельных коров поливалентной
гидроокисиалюминиевой формол-тиомерсаловой вакциной против
колибактериоза (эшерихиоза) телят не ингибирует серотипы Е. coli О8 и
О101, входящие в состав вакцины и выделенные от павших телят.
9. При статистической обработке результатов исследования с применением
ЭВМ «НАИРИ» крови новорожденных телят, установлено, что использование
трех показателей легко измеряемых величин (мочевина, гематокрит,
хлориды) позволяет прогнозировать заболевание и, следовательно,
профилактировать с применением регидратационной терапии, возмещением
кислотности и потери ионов натрия.
10. Уровень фагоцитарной активности и фагоцитарной интенсивности в крови
телят в послемолочный период статистически достоверно повышался до 5-
дневного возраста в контрольной группе (здоровые) соответственно
+7,55 и +0,33 (Р<0,001) и в первой опытной (больные) +2,89 и +0,23
(Р<0,001). Во второй опытной группе (павшие) не отмечали повышение
фагоцитарных показателей.
11. Бактерицидная активность сыворотки крови зависит от возраста телят,
наиболее низкий уровень отмечен у новорожденных до приема молозива
(21,23±0,55 %). Повышение бактерицидной активности установлено у
здоровых телят на 2-, 5-й дни жизни по сравнению с периодом до
выпойки молозива. На 10-й день у больных телят отмечали достоверное
снижение бактерицидной активности по сравнению с 5-дневным возрастом.
Коэффициент корреляции между фагоцитарной и бактерицидной активностью
у больных телят равен 0,81, что указывает на высокую степень
взаимосвязи.
12. Комплементарная активность у новорожденных телят (здоровых)
возрастает достоверно (Р<0,05) до 30-дневного возраста по сравнению с
периодом до выпойки молозива. Так, активность комплемента у здоровых
телят после выпойки молозива увеличилась на 2-, 5-, 10-й дни
соответственно в 1,35, 1,38 и 1,46. В то время как у больных в
аналогичный период это увеличение составило 1,19, 1,13 и 1,14 раза. У
павших животных на 2-, 5-й дни жизни увеличение равнялось 1,10 и 1,11
раза, что не обеспечивало сохранность животных.
13. Новорожденные телята обладают достаточно выраженной лизоцимной
активностью, которая после выпойки молозива увеличилась у здоровых
телят на 2-й день в 2,77 раза, на 5-й день в 2,82 раза и на 10-й день
в 2,9 раза, у больных это увеличение соответственно равняется 1,97,
1,41 и 1,89 раза. Увеличение лизоцимной активности в 1,3 раза на 2-й
день и в 1,35 раза на 5-й день во второй опытной группе (больные-
павшие) не предохраняло телят от гибели.
14. Увеличение пропердиновой активности в сыворотке крови новорожденных
животных после выпойки молозива установили на 2-й, 5-й и 10-й дни
соответственно в 1,41, 1,77 и в 1,71 раза, у больных телят увеличение
пропердиновой активности отмечали в 1,5 раза только в 10-дневном
возрасте, во второй опытной группе (больные-павшие) содержание
пропердина в сыворотке крови на 2-й, 5-й дни после поения молозивом
существенно не изменялось 2,78±0,03 и 2,77±0,025 против 2,93±0,03 до
поения молозивом.
15. Применение ретинола внутримышечно в дозе 100000-150000 МЕ 1 раз в
сутки в течение 2-3 суток и лактоглобулина внутривенно в дозе 75-80
мл 1 раз в сутки в течение 1-2 суток обеспечивает иммунокоррекцию до
95,0 %.
16. Применение хлорпромазина внутримышечно в форме 2,5%-ного раствора в
дозе 0,6-0,8 мл на 1 кг живой массы 1 раз в сутки в течение 2-3 суток
и 0,01%-ного раствора Т-активина подкожно в дозе 0,8-1,0 мл ежедневно
в течение 2-3 суток обеспечивает терапевтическую эффективность до
93,4 %.
7. РЕКОМЕНДАЦИИ ПРОИЗВОДСТВУ.
1. Для обеспечения максимальной сохранности здоровых, жизнеспособных
телят, рекомендуется применение колостральной сыворотки и
лактоглобулина для коррекции иммунодефицита неонатальных телят
(Методические рекомендации, одобренные НТС МСХ и продовольствия
Республики Молдова, Кишинев, 1992).
2. Для выявления «К» антител-агглютининов против К-антигенов Е. coli
рекомендуется экспресс-индикация их уровня в колостральной сыворотке
коров и сыворотке крови новорожденных телят (Методические
рекомендации, одобренные НТС МСХ и продовольствия Республики Молдова,
Кишинев, 1994).
3. Для коррекции иммунодефицита новорожденных телят рекомендуется
применение ретинола и лактоглобулина (Патент №345 от 31.12.1995,
Республики Молдова).
4. Кислотно-основной баланс рекомендуется изучать по трем основным
показателям: гематокриту, мочевине, хлоридам.
5. Для лечения больных телят колибактериозом рекомендуется использовать
хлорпромазин и Т-активин (Патент №409 от 29.02.1996, Республики
Молдова).
6. Результаты экспериментальных исследований, изложенные в настоящей
диссертации, целесообразно включить в программу повышения
квалификации ветеринарных и зооинженерных специалистов и в раздел
«Инфекция и иммунитет» для студентов ветеринарных и зооинженерных
факультетов аграрных университетов и колледжей.
-----------------------
[pic]
Рис. 3.4 Комплементарная активность сыворотки крови новорожденных телят в
зависимости от клинического статуса.
Рис. 3.6 Пропердиновая активность сыворотки крови новорожденных телят в
зависимости от клинического статуса
Рис. 2.4 Содержание иммуногловулинов в сыворотке крови и секрете
молочной железы коров (n=18).
Рис. 2.5 Содержание иммунных глобулинов в молозиве коров
Рис. 3.3 Бактерицидная активность сыворотки крови новорожденных телят в
Рис. 3.5 Лизоцимная активность сыворотки крови новорожденных телят в
%
Страницы: 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20
