значительной инфицированостью внешней среды и снижением вследствие этого

защитного уровня молозива.

Содержание иммуноглобулинов через 24 ч в сыворотке крови телят сильно

варьировало в составило от 19,85 до 29,11 мг/мл. Такая разница объясняется

количеством проглоченного теленком молозива.

Способность новорожденных животных адаптироваться к изменениям внешней

среды лимитировано и изменение условий, не влияющих на взрослых животных,

может плохо отразиться на состоянии здоровья телят. Известно, что стресс

является способствующим фактором возникновения диареи у телят. Причиной

стресса могут быть различные условия внешней среды, порой самые безобидные

и поэтому весьма трудно их предотвратить. Даже перемещение является

причиной стресса, который приводит к увеличению уровня заражения

инфекционными агентами. Низкая температура, сквозняки, влажная подстилка

способствуют возникновению и распространению инфекции. Следовательно,

иммунологический статус, необходимый для защиты организма зависит от

количества молозива, проглоченного теленком в первые минуты жизни и условий

внешней среды.

При концентрации иммуноглобулинов 15,37±0,19 мг/мг (доверительный

интервал 14,82-15,90 мг/мл) у животных отмечали септическую форму диареи,

депрессию, дегидратацию. Возникновение болезни характеризовалось профузным

поносом, усиленной перистальтикой кишечника, запавшими глазами, телята не

могли стоять и погибали в 7-10-дневном возрасте. Существенное уменьшение

концентрации иммунных глобулинов ассоциировалось с тяжелой формой

дегидратации и диареей.

Анализируя результаты абсорбции колостральных иммуноглобулинов

новорожденными телятами, необходимо отметить, что всасывание

иммуноглобулинов происходит в кишечнике и через лимфатические пути они

попадают в кровь. Иммуноглобулины появляются в лимфе через 1-2 ч после

поступления их в двенадцатиперстную кишку животных. Однако, факторы,

обеспечивающие всасывание нерасщепленных молекул белка, как и причины, по

которым оно становится невозможным, до настоящего времени изучены

недостаточно.

Некоторые авторы [J. E. Butler, C. A. Kiddy, C. Maxwele, M. B. Hylton,

A. Asofsky, 1971; J. E. Butler, C. Maxwele, 1972; P. Dobbelaar, I. P. T. M.

Noordhuizen and Van K. A. S. Keulen, 1987] указывают на существовании

специальных внутриклеточных рецепторов узнавания, обеспечивающих передачу

белков в крови. Исследования механизмов транспорта и катаболизма

иммуноглобулинов in vitro показывает, что на первых этапах всасывания

формируется комплекс между иммуноглобулинами и специфическими рецепторами

энтероцитов. Во взаимодействии с рецепторами клеток кишечника участвует Fc-

фрагмент иммуноглобулинов. По-видимому, связывание иммуноглобулинов с

клетками предохраняет их от катаболизма и способствует транспорту в крови.

Дальнейшее изучение колострального иммунитета новорожденных и

выживаемости животных в неонатальный период связано с разработкой ряда

вопросов выяснения механизма абсорбции иммуноглобулинов у новорожденных

животных и роли иммуноглобулинов различных классов в создании

колострального иммунитета; изучение клеточного колострального иммунитета;

определения наиболее важных факторов, оказывающих влияние на содержание

иммуноглобулинов в молозиве и сыворотке крови; унификация методов

исследования содержания иммуноглобулинов с целью получения сопоставимых

данных.

Изучая активность антител против К-антигена Е. coli в молозиве и в

сыворотке крови телят 1-2 -дневного возраста, установили, что она была

меньшей, чем активность против О-антигенов. Различная концентрация антител

(титр) в сыворотке новорожденных телят против К- и О-антигенов Е. coli

указывает, что кормление молозивом может стимулировать или подавлять синтез

антител к определенным антигенам в одинаковой степени независимо от места

их локализации в бактериальных клетках[B. Kaijser, S. Ahlstedt, 1977].

Иммуноглобулины в молозиво извлекаются селективной секрецией из

сыворотки крови коров. Следовательно, специфичность антител в молозиве

определяется специфичностью антител в сыворотке крови коров. Кроме того,

уровень антител в сыворотке крови коров зависит от воздействия на

иммунокомпетентные клетки специфических антигенов-иммуногенов, то есть

активность антител молозива коров является рефлекторным отражением

специфичности антигена. Вероятно, если определенные серотипы Е. coli

имеются во внешней среде (коровник, родильное отделение), коровы

впоследствии продуцируют специфические антитела и передают их через

молозиво телятам. это имеет место в том случае, когда инвазионные и

вирулентные серотипы Е. coli вызывают антигенную стимуляцию

иммунокомпетентных клеток большую, чем не вирулентные штаммы.

Высший средний титр колостральных антител против К-антигена Е. coli был

установлен против штамма Е. coli О137:К79. Идентификация антител в

сыворотке молозива и в сыворотке крови телят против серотипов Е. coli

О78:К80 и О119:К69 в более низких титрах и низшей частоте, может

постулироваться их незначительной вирулентностью, инвазивнностью или тем,

что антитела обладают перекрестной реакцией защиты и не специфичны для этих

серотипов.

Результаты абсолютного теста сыворотки молозива и сыворотки крови телят

указывают на перекрестную абсорбцию антител против Е. coli К- антигенов

исследуемых серотипов. Перекрестная абсорбция была, особенно, очевидной с 2-

типами В антигенов, так как абсорбция с 1 антигеном идентифицирует антитела

против 2 антигенов (О78:К80 и О119:К69). Эти данные подтверждают

значительную перекрестную реактивность антител к К-антигенам. Такая кросс-

реактивность антител обеспечивает защиту неонатальных телят против инфекции

с более чем 1 штаммом Е. coli. Следовательно, антитела с перекрестной

активностью против К-антигенов Е. coli в естественных условиях способствует

повышению резистентности неонатальных телят против различных штаммов.

Корреляционные таблицы биохимических показателей крови новорожденных

телят указывает, что определенные параметры имеют очень сходные поведение

(например, 1 и 4 бикарбонатная концентрация изменяется, непосредственно, в

зависимости от рН крови, феномен хорошо известный). На другие параметры

передается их обратная связь, как например, частичное соприкосновение с

противоположной связью СО2 и О2.

Кроме того, корреляционный анализ показывает на сопротивление между

парциальным давлением О2 в венозной крови и показателями кислотно-щелочного

равновесия, в частности парциального давления СО2 в порядке нейтрализации

метаболического ацидоза в нормальном противодействии уменьшающим количества

О2 в тканях. Следовательно, снижение парциального давления СО2 указывает на

уменьшение количества О2 в тканях.

Данные исследования показывают, что выжевшие телята имеют преимущество в

количественном отношении изучаемых величин перед павшими животными.

Концентрация калия (мера катаболизма) имеет тенденцию к увеличению, в то

время как концентрация натрия в крови уменьшается.

При тестировании естественной резистентности организма развивающихся

животных принципиально важным является вопрос о подборе тест-микроба.

Данные эпизоотологического анализа подтверждают, что во время

внутриутробного развития инфекционную патологию у крупного рогатого скота

вызывает преимущественно грамотрицательная микрофлора, поэтому для

определения противомикробной активности факторов естественной

резистентности (фагоцитоз, лизоцимная, бактерицидная активность),

использовали в качестве тест культуры эшерихии. Так как, по значимости в

патологии крупного рогатого скота, экологической пластичности, изученности

свойств, доступности для поддержания и использования требованиям,

предъявляемым к тест культурам, эшерихии являются наиболее подходящей

моделью.

При тестировании фагоцитарной активности лейкоцитов телят подбирали

соотношение тест-микроба и фагоцитирующих элементов, не допуская перегрузки

последних, что особенно важно для новорожденных животных. Во избежание

паралича фагоцитов, вызываемого патогенными факторами, в качестве тест

микроба использовали культуру не вирулентного штамма.

При определении бактерицидной активности особое внимание уделяли подбору

экспозиции контактирования тест- микроба с исследуемой пробой и тест штамма

эшерихий, колонии, которых для полноценного выявления противомикробных

свойств сыворотки должны быть в гладкой, а не в вариантных формах.

Лизоцимную активность определяли с учетом замедленной активности

фермента крупного рогатого скота, тщательной подготовки материала к

исследованию, что позволяло избегать ошибок, связанных с действием на тест-

микробы других метрических факторов исследуемой пробы.

Тестирование комплементарной активности сыворотки крови было основано на

подборе индикаторной системы, чувствительной к комплементу крупного

рогатого скота, который не вызывает лизиса эритроцитов в классической

гемолитической системе, вероятно, из-за лимитирующего содержания отдельных

компонентов [П. А. Емельяненко, О. И. Грызлова, Г. Н. Печникова и М. Н.

Тулупова, 1980].

Для определения пропердина использовали модифицированный метод, как

более доступный из-за удешевления источника комплемента и уменьшения объема

проб исследуемого материала [О. Н. Грызлова, П. А. Емельяненко, В. Н.

Денисенко, 1978].

Анализируя показатели неспецифической иммунологической реактивности

Страницы: 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20