болезни, анализировали эффективность лечебных мероприятий, производили

патологоанатомическое вскрытие и бактериологические исследования с

последующей идентификацией выделенных культур.

Для патологоанатомических и бактериологических исследований

использовали животных не подвергшихся лечению антибиотиками и

химиотерапевтическими препаратам, через 1-4 ч после гибели, а также убитых

с диагностической целью.

Высевы производили на МПА, МПБ и агар Эндо в чашках Петри из

содержимого крови, сердца, селезенки, почек, печени, желчного пузыря,

костного мозга, мезентеральных лимфатических узлов пораженных участков

тонкого отдела кишечника.

Для идентификации снимали с агара Эндо по 3 одинаковые, не

отличающиеся по цвету и морфологии, колонии.

Видовую принадлежность выделенных культур устанавливали путем изучения

культурально-морфологических и тинкториальных свойств, ферментативной

активности, а также по патогенности для белых мышей и серологической

типизации.

Анализ показал, что в обследованном хозяйстве имеет место нарушения

санитарно-гигиенических и ветеринарных правил содержания и кормления коров

и новорожденных телят. В хозяйстве в первые 2-3 дня жизни заболевали почти

все новорожденные животные с признаками диареи. Летальность варьировала до

50 % и более. Гибель новорожденных наступала в отдельных случаях в первые

сутки жизни, но в большинстве случаев в течении первых десяти суток.

Клиническая картина болезни проявлялась угнетением, вялостью, пониженным

аппетитом, диареей.

Патологоанатомическому и бактериологическому исследованию подвергнуто

5 трупов и фецес больного теленка, У 4 трупов картина

патологоанатомического вскрытия соответствовала специфической форме

колибактериоза, а в одном случае изменения характеризовались поражением

желудочно-кишечного тракта и мезентеральных лимфатических узлов.

Из органов 5 трупов и фецеса больного теленка выделена 21 культура.

Вирулентность выделенных культур была различной и она варьировала в

пределах одного трупа и даже одного органа.

Из большинства паренхиматозных органов, или мезентеральных

лимфатических узлов и пораженных участков тонкого участка кишечника

выделена чистая культура Е. coli энтеропатогенных серогрупп (О78:К80;

О119:К69; О137:К79). Серологическую типизацию по О-антигену проводили при

помощи О-диагностических сывороток, приготовленных Армавирской биофабрикой.

Определение К-антигена проводили при помощи ОК-сывороток Московского

института вакцин и сывороток имени И. И. Мечникова.

Для коррекции иммуноглобулинового дефицита (меньше 20 мг/мл по цинк-

сульфатному тесту) вводили внутривенно по 50 мл лактоглобулина или по 100

мл колостральной сыворотки через 24-36 ч после первой выпойки молозива (не

позже 2 ч после рождения) телятам.

С целью профилактики и лечения больных животных колостральную

сыворотку и лактоглобулины применяли телятам 1-2 -дневного возраста.

Одновременно исключали одну выпойку молозива, заменяя ее подогретым до 37-

38° С изотоническим раствором хлорида натрия в количестве 1000 мл и вводили

внутримышечно или подкожно по 0,5 мл лактоглобулина или по 1 мл

колостральной сыворотки на 1 кг живой массы теленка. Препараты перед

применением подогревали на водяной бане до 37-38°С.

При последующем кормлении телятам однократно вводили по 300-350 мл

молозива разбавленного изотоническим раствором хлорида натрия (800-1000мл),

постепенно увеличивая в каждое последующее кормление количество молозива на

150-200 мл до полной суточной дозы.

Препараты инъецировали повторно через 24 ч. Лечение телят продолжали

до полного исчезновения клинических признаков заболевания (улучшение общего

состояния, восстановления приема молозива др.). Выздоровление телят, как

правило, наступало после 2-3 разового применения колостральной сыворотки

или лактоглобулина. Препараты не оказывали побочного действия и не вызывали

осложнений. Противопоказаний к их применению нет.

Наряду с применением колостральной сыворотки и лактоглобулина, в

хозяйстве проводили комплекс ветеринарно-санитарных мероприятий,

предусмотренных при выращивании телят молозивного периода [B. C. Шипилов,

В. П. Шишков, В. Г. Зароза, В. П. Карев, Г. Д. Смоленская, 1987].

Проведение указанных мероприятий приводило, как правило, к ликвидации

заболевания.

Наставление по применению колостральной сыворотки и лактоглобулина с

цепью профилактики колибактериоза телят одобрено научно-техническим советом

Министерства сельского хозяйства и продовольствия Республики Молдова

(протокол №3 от 3.Х.91 г.).

4.2. Эффективность лактоглобулина и ретинола применяемых с целью коррекции

иммунодефицита новорожденных телят.

Лечение новорожденных телят при иммунодефицитном состоянии без

применения иммунокорректирующих препаратов очень затруднительно в связи с

тем, что телята рождаются гипогаммаглобулинемичными, крайне важна быстрая

абсорбция колостральных иммунных лактоглобулинов, что связано с

своевременным поглощением молозива. Эффективность абсорбции иммунных

лактоглобулинов связано с количеством проглоченного молозива, возраста

телят и влияния присутствия коров-матерей в течение первых 24 ч жизни.

Для идентификации иммунодефицита телят применяют простой, но точный

тест — цинк-сульфатный.

Известны способы лечения колибактериоза у телят, основанные на

использовании препаратов, содержащих антибиотики, сульфаниламиды и

нитрофураны.

Однако они обладают целым рядом недостатков. Прежде всего они

характеризуются весьма относительной лечебной эффективностью.

Микроорганизмы быстро адаптируются к антибиотикам, становятся

полирезистентными. Тестирование эффективности терапевтических препаратов

против колибактериоза у телят зависит от определения концентрации

сывороточных иммуноглобулинов, так как при низкой концентрации лечение, как

правило, не эффективно.

Наиболее близким предлагаемому является способ лечения колибактериоза у

телят с использованием лактоглобулина путем выпаивания в дозе 150-200 мл

[R. Aschaffenburg, S. Bartlett, S. K. Kon, J. M. Roy and D. M. Walker,

1951a]. Однако данный способ не обеспечивает достижения терапевтического

эффекта.

Задачей является повышение эффективности лечения за счет коррекции

иммунодефицита и поддержания нормального состояния эпителия слизистых

оболочек пищеварительного тракта новорожденных телят.

Это достигается тем, что в способе лечения телят от колибактериоза,

предусматривающем использование лактоглобулина дополнительно вводят ретинол

(ретинола ацетат) внутримышечно в дозе 100000-150000 МЕ 1 раз в сутки в

течение 2-3 суток, причем лактоглобулин вводят внутривенно в дозе 75-80 мл

1 раз в сутки в течение 1-2 суток.

Совместное действие обоих препаратов обеспечивает высокую эффективность

лечения. При этом повышается неспецифическая иммунологическая реактивность

организма, способствующая подавлению жизнедеятельности возбудителя болезни.

В свою очередь, исключение использования антибиотиков способствует

сохранению эубактериоза организма и предотвращает развитие аллергических

реакций у людей.

Способ осуществляется следующим образом. Вводят ретинол (ретинола

ацетат) внутримышечно в дозе 100000-150000 МЕ 1 раз в сутки в течение 2-3

суток, причем лактоглобулин вводят внутривенно в дозе 75-80 мл 1 раз в

сутки в течение 1-2 суток.

Пример осуществления способа. На молочной ферме учхоза «Кетросу» с

поголовьем 220 коров заболели колибактериозом 64 теленка. Для лечения

заболевших животных был использован предлагаемый способ, в соответствии с

которым инъецировали внутривенно лактоглобулин в дозе 75-80 мл 1 раз сутки

а течение 1-2 суток, а также вводили ретинол (ретинола ацетат)

внутримышечно в дозе 100000-150000 МЕ 1 раз в сутки а течение 2-3 суток. В

результате проведенного лечения выздоровело 62 теленка.

Для определения оптимальных параметров способа был поставлен ряд

опытов, результаты которых сведены в таблицы 4.1-4.5.

Таблица 4.1.

Определение разовой дозы лактоглобулина

|Группа |Количество |Доза в мл |Кратность |Выздоровело, % |

| |голов | |введения | |

|1 |20 |60 |1 |0 |

|2 |20 |65 |1 |0 |

|3 |20 |70 |1 |20 |

|4 |20 |75 |1 |40 |

|5 |20 |80 |1 |40 |

|6 |20 |85 |1 |40 |

Как следует из таблицы, введение лактоглобулина в дозе менее 75 мл не

эффективно или мало эффективно. При повышении дозы более 80 мл дальнейшего

увеличения эффективности лечения не происходит. Таким образом, оптимальной

является разовая доза внутривенного введения лактоглобулина в пределах 75-

80 мл.

Таблица 4.2

Определение кратности введения лактоглобулина

|Группа |Количество |Доза в мл |Продолжительность |Выздоровело, %|

| |голов | |курса | |

|1 |20 |75 |1 |75 |

Страницы: 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20