2. Чистые щетки для мытья рук
3. Фартуки (клеенчатые или полиэтиленовые)
В. Операционная
1. Рабочий стол анестезиологов
2. Операционный стол
3. Шланг вакуумнасоса
4. Шланг кислородной подводки
5. Смывы с рук всех участвующих в операции
6. Кожа операционного поля
Г. Послеоперационные палаты, отделения и палаты реанимации и интенсивной
терапии
1. Кровать, подготовленная для больного
2. Полотенце для рук персонала и смывы с рук
3. Щетка на раковине
5. Запасная наркозная аппаратура (набор реанимационной укладки)
6. Шланг вакуумотсоса
7. Внутренняя поверхность холодильника (для хранения лекарств)
8. Градусники
Д. Перевязочная
1. Кушетка для перевязок
2. Полотенце для рук персонала
4. Халат медицинских сестер
5. Руки врачей, медицинских сестер
6. Рабочий медицинский стол
7. Внутрення поверхность холодильника для хранения лекарств
3.4 Контроль на стерильность хирургического инструмента
Инструментарии для медицинских манипуляции по риску различяют:
Критические - проникают в стерильные ткани или сосуды: имплантаты,
скальпели, иглы, другие хирургические инструменты и т.д. Стерилизация -
спороцидные химические вещества, длительный контакт. Средства для
стерилизации или дезинфекции
Полукритические - соприкасаются со слизистыми оболочками (за
исключением стоматологических инструментов):г ибкие эндоскопы,
ларингоскопы, эндотрахеальные трубки, а также другие аналогичные
инструменты. Дезинфекция высокого уровня - спороцидные химические вещества,
кратковременный контакт. Средства для стерилизации или дезинфекции
Термометры, ванны для гидротерапии. Дезинфекция среднего уровня.
Больничные дезинфицирующие средства с указанием в маркировке о наличии
туберкулоцидной активности.
Некритические (соприкасаются с неповрежденной кожей): стетоскопы,
настольные приборы, подкладные судна и др. Дезинфекция низкого уровня.
Больничные дезинфицирующие средства без указания в маркировке о наличии
Хирургический инструментарий с помощью стерильного пинцета извлекают из
бикса или мягкой упаковки и целиком погружают в пробирки с питательными
средами. Как исключение, в отдельных случаях, если все простерилизованные
инструменты в одной упаковке крупных размеров (иглодержатели,
ранорасширители и т.д.), производят смыв с поверхности инструмента
стерильной салфеткой, смоченной в стерильном физиологическом растворе
или стерильной водопроводной воде и погружают салфетку в пробирку с
тиогликолевой средой. Аналогичные смывы с других инструментов засевают в
пробирки со средой Хоттингера и Сабуро.
Методика посева на стерильность игл и шприцев. Для контроля на
стерильность отбирают шприцы малой емкости (1,0 или 2,0 мл) в условиях
бактериологического бокса, с соблюдением правил асептики погружают в
пробирки с питательными средами отдельно цилиндр, поршень, иглы. При
необходимости контроля шприцев большой емкости (10, 20 мл и более)
исследование стерильности производят методом смыва, при этом стерильной
салфеткой, смоченной в стерильном физиологическом растворе или
водопроводной воде, протирают с помощью пинцета внутренние части шприца и
погружают салфетку в питательную среду.
Исследование на стерильность систем переливания крови многоразового
использования. От резинового шланга, ближе к игле, отрезают ножницами
с помощью пинцета небольшие кусочки (1-2 см) и погружают в пробирки с
питательными средами, иглу отдельно погружают в питательные среды.
Посев на стерильность катетеров, резиновых перчаток и др. изделий из
резины и пластикатов. Контроль стерильности зондов, катетеров, резиновых
перчаток и других изделий из резины производят путем полного
погружения мелких изделий в питательные среды, от более крупных с
помощью стерильного пинцета стерильными ножницами отрезают небольшие
кусочки (1-2 см) и погружают в питательные среды.
Посев на стерильность хирургического шовного материала. Перед посевом
емкость с отобранными образцами шовного материала в предбокснике протирают
стерильной марлевой салфеткой, обильно смоченной 6% раствором перекиси
водорода, и оставляют на 30 минут. Затем вносят в бокс.
1. Кетгут. Подготовленный к работе кетгут в операционном блоке хранят в
спиртовом растворе йода. Кетгут перед посевом подвергают
специальной обработке для нейтрализации и отмывания нейтрализующего
раствора. Моток кетгута, приготовленный для исследования,
перекладывают стерильным карнцангом или пинцетом в стерильный 10%
раствор гипосульфита натрия. Раствор гипосульфита натрия готовят на
дистиллированной воде, разливают в пробирки (колбы) по 20-30
мл, стерилизуют текучим паром по 30 минут в продолжении 3 дней.
Кетгут выдерживают в растворе гипосульфита в течение 24 часов при
комнатной температуре (возможно помутнение раствора за счет выпадения
серы), затем перекладывают в пробирки с 20-30 мл стерильной
дистиллированной воды, где также выдерживают в течение 24 часов при
комнатной температуре. Непосредственно перед посевом оток кетгута
извлекают стерильным пинцетом и перекладывают в терильную чашку
Петри, с помощью пинцета и ножниц его разрезают на мелкие кусочки
длиной 1-2 см и раздергивают для прорастания микроорганизмов кетгута.
Посев производят в 2 пробирки с тиогликолевой средой, 2 пробирки со
средой Сабуро и 2 пробирки со средой Хоттингера, помещая в
каждую пробирку по 4-5 кусочков исследуемого материала.
2. Шелк. Подготовленный к работе шелк в операционных хранят в спиртовом
растворе, поэтому перед посевом шелк (лавсан) помещают на 24 часа в
стерильную дистиллированную воду при комнатной температуре. Перед
посевом моток шелка (лавсана) перекладывают в стерильные чашки Петри,
разрезают на мелкие кусочки длиной 1-2 см. Посев шелка производят
так же как и кетгута.
Исследование на стерильность аппаратов экстракорпорального
кровообращения. Исследование на стерильность аппарата искусственного
кровообращения проводит бактериолог и лаборант лечебно-профилактического
учреждения в операционной после асептической сборки аппарата.
Контролю подлежат:
- смыв из аппарата;
- перфузат до перфузии;
- кровь после перфузии.
Стерильный физиологический раствор в количестве не менее 250 мл
прогоняют через аппарат, подготовленный к операции, отбирают 100 мл
раствора и засевают на питательные среды. Аналогично производят посев
перфузата до перфузии и крови после перфузии.
Посев на стерильность перевязочного материала. Бинты, ватные шарики,
марлевые салфетки, турунды и т.п. отбирают из разных мест бикса стерильным
пинцетом. Мелкие изделия целиком погружают в пробирки с питательными
средами. От бинтов (внутренних частей) и крупных марлевых салфеток с
помощью стерильных ножниц отрезают кусочки и погружают в пробирки с
питательными средами. На каждый вид перевязочного материала используют
по 2 пробирки каждой среды.
Посев на стерильность хирургического белья. Простерилизованными и
фламбированными ножницами (смоченными в спирте и проведенными через пламя
горелки) с помощью пинцета от хирургического белья отрезают небольшие
кусочки ткани (завязка, внутренние швы и т.п.) и погружают в пробирки
(колбы) с питательными средами, по возможности, не касаясь пробирки
(колбы).
4. Правила забора материала на исследование
В соответствии с Приказом Министерства здравоохранения № 535 от
22.04.1985 г. и № 8 от 19.01.1995 г. задачи по совершенствованию и
унификации диагностической базы возлагаются прежде всего на лабораторию
клинической микробиологии. Поэтому микробиологические аспекты деятельности
больничного эпидемиолога на практике сводится к организации и контролю
правильного взятия, хранения и транспортировки материала для
микробиологического исследования.
Биологический материала микробиологических методов исследования следует
брать в максимально стерильных условиях, тщательно соблюдая правила
асептики и по возможности избегая контаминации образцов микроорганизмами из
окружающей среды.
Образцы для посевов необходимо брать до начала лечения
антибактериальными препаратами или в интервалах между приёмом антибиотиков
(не менее 12 часов). Отобранный материал должен быть маркирован и как можно
быстрее доставлен в микробиологическую лабораторию. При необходимости
образцы помещают в транспортную среду. Некоторые образцы требуют хранения
при t 37°, другие – при пониженной (холодильнике).
5. В микробиологических исследованиях применяются следующие питательные
среды:
1. Для определение общего микробного числа микроорганизмов используется
чаще всего 1% пептонную воду или мясопептонный бульон (МПБ).
2. Для обнаружение стафилококков используется:
- молочно-солевой агар: к 1 л мясопептонного бульона добавляют 65 г
хлорида натрия и 20 г сухого агар-агар. Разливают по колбам и
стерилизуют при 120°С 20 мин. Перед посевом к расплавленному и
охлажденному до 45°С агару добавляют 10% стерильного молока,
равномерно смешивают и разливают в чашки Петри.
- желточно-солевой агар Чистоковича. 100 мл желточной эмульсии (один
Страницы: 1, 2, 3, 4, 5
