Приготовление мазка и толстой капли крови при малярии. Основной метод
лабораторной диагностики малярии — обнаружение эритроцитарных паразитов в
толстой капле или мазке крови. В практической работе исследуют
преимущественно толстые капли, так как за один и тот же промежуток времени
в толстой капле можно просмотреть в 30— 50 раз больший объем крови, чем в
мазке, а, следовательно, и количество плазмодиев в ней больше. К мазку
обращаются лишь в тех случаях, когда видовую принадлежность найденных
паразитов по толстой капле установить не удается. Для выявления
возбудителей малярии кровь берут при первом же подозрении на эту инфекцию
независимо от температуры тела (лучше всего во время лихорадки или сразу
после озноба), поскольку паразиты циркулируют в крови и в интервале между
приступами.
Предметные стекла, на которых готовят препараты, должны быть хорошо
вымыты и обезжирены. Кровь берется с соблюдением правил асептики. Кожу
пальца протирают спиртом и прокалывают простерилизованной иглой-копьем или
толстой инъекционной иглой.
Если кровь из мякоти пальца вытекает плохо, то больного просят сделать
несколько энергичных движений рукой, кистью и слегка массируют палец.
Первую выступившую каплю крови вытирают сухой ватой, затем палец
поворачивают проколом вниз и ко второй капле прикасаются предметным
стеклом.
Тонкие мазки крови приготавливают по методике, общепринятой для
гематологических исследований. Мазок не должен доходить ни до конца, ни до
краев предметного стекла. Поэтому капля крови должна быть диаметром не
более 2—3 мм. Предметное шлифованное стекло, которым делается мазок, должно
быть уже стекла, на которое наносят мазок. Для этого углы шлифованного
стекла обламывают пинцетом. В целях приготовления мазка шлифованное стекло
ставят перед каплей крови под углом 45° и продвигают вперед до
соприкосновения с ней. Когда кровь равномерно распределится между обоими
стеклами, быстрым движением делают мазок.
Для приготовления толстой капли крови на предметное стекло наносят
каплю крови диаметром около 5 мм. Эту каплю размазывают иглой или углом
предметного стекла в диск диаметром 10—15 мм. Толщина капли должна быть
такой, чтобы сквозь нее можно было читать газетный шрифт. Мазки не должны
быть толстыми, поскольку после высыхания они растрескиваются и отстают от
стекла. Обычно на стекло наносят 2—3 капли на некотором расстоянии одна от
другой. Взятые капли должны быть отмечены. На обратной стороне стекла
восковым карандашом указывается фамилия больного или соответствующий
регистрационный номер.
Очень удобно наносить толстую каплю на влажный толстый мазок крови. В
этом случае капля самостоятельно растекается в правильный диск. Простым
карандашом на мазке делается маркировка препарата. Такой препарат удобен
еще и тем, что в мазке довольно хорошо сохраняется часть пораженных
эритроцитов, а это важно для уточнения вида паразита. Преимущество данного
метода в том, что капля, нанесенная на мазок, удерживается более прочно,
чем нанесенная непосредственно на стекло.
Приготовленные толстые капли высушивают при комнатной температуре не
менее 2—3 ч без какого-либо дополнительного подогревания во избежание
фиксации крови. После высыхания капли на нее наливают краску Романовского —
Гимзы, разведенную как обычно (2 капли краски на 1 мл дистиллированной
воды). Продолжительность окраски в среднем составляет 30— 45 мин.
Окрашенную каплю осторожно ополаскивают водопроводной водой (сильная струя
может смыть каплю) и просушивают в вертикальном положении. Фильтровальной
бумагой ее высушивать нельзя. При окраске капли в водных растворах красок
происходит выщелачивание гемоглобина из эритроцитов, вследствие чего в
окрашенной капле эритроциты уже не видны. Из форменных элементов
сохраняются лейкоциты и тромбоциты.
Мазки фиксируют, помещая их на 3 мин в метиловый или на 10 мин в 96 %
этиловый спирт. Зафиксированные препараты высушивают на воздухе, защищая от
пыли и мух. Потом препараты помещают в специальный контейнер и окрашивают
азур-эозиновым красителем по Романовскому — Гимзе на протяжении 20— 30 мин.
По истечении этого срока контейнер подставляют под слабую струю воды и
промывают. После того как из контейнера польется неокрашенная вода, остатки
ее сливают и промывают еще раз. Не рекомендуется сначала сливать краску, а
затем промывать мазок водой, поскольку пленка, образовавшаяся на
поверхности красителя, может попасть на препараты и оказаться причиной
диагностической ошибки. Капля на мазке окрашивается так же, как толстая
капля.
Промытые препараты высушивают и исследуют под микроскопом. В зараженных
эритроцитах видны плазмодии малярии с голубой цитоплазмой и ярко-красным
ядром. Нахождение плазмодиев малярии в крови больного является неоспоримым
доказательством болезни.
Забор крови для серологического исследования.
Сущность серологических методов исследования состоит в определении
роста титра антител в сыворотке крови больного по отношению к известному
антигену, вводимому в серологическую реакцию. В клинической практике чаще
всего используется РА (Видаля) и ее разновидности, РНГА, РСК.
Забор крови для серологического исследования выполняется так же, как и
при посеве, но в отличие от последнего его лучше осуществлять самотеком, а
не
шприцом. Для этого берут иглу с более широким просветом и вводят в
локтевую вену без шприца. В пробирку собирают 3—5 мл крови. При таком сборе
эритроциты меньше травмируются и сыворотка крови реже бывает с явлениями
гемолиза. После отстаивания и центрифугирования крови сыворотку с помощью
пипетки переносят в другую пробирку или эпиндорф и хранят в холодильнике
при температуре +4 С до постановки реакции.
Поскольку иммунный ответ при большинстве инфекционных болезней
развивается с 5—7-го дня, а максимальное нарастание антител происходит лишь
в периоде реконвалесценции, серологические методы менее пригодны для ранней
диагностики и используются главным образом в целях ретроспективной
расшифровки этиологии уже перенесенного инфекционного заболевания. Однако
кровь для серологических исследований берется и в первые дни болезни, что в
дальнейшем дает возможность наблюдать за нарастанием титра антител в
динамике заболевания. Повторные серологические исследования при
бактериальных инфекциях производятся не раньше, чем через 5—7 дней. При
вирусных заболеваниях берутся «парные сыворотки» с интервалом 10—12 дней и
при нарастании титра антител в 4 раза подтверждается диагноз
предполагаемого заболевания.
С внедрением в практику методов ИФА, РИА и других диагностическая
ценность серологических исследований в острую фазу болезни значительно
возросла.
Определение относительной плотности плазмы (крови)
купросульфатным методом. При некоторых инфекционных
заболеваниях, сопровождающихся дегидратацией (холера, сальмонеллезы и др.),
возникает необходимость в проведении патогенетической терапии,
направленной на восполнение имеющихся и продолжающихся потерь воды и
электролитов (компенсаторная регидратация). Для определения объема
вводимой жидкости можно пользоваться формулой Филлипса: 4 * 103
(D—1,025) X X Р = V, где 4 • 103 — коэффициент; D — относительная плотность
плазмы больного; 1,025 — относительная плотность плазмы в норме; Р — масса
тела больного, кг; V — необходимый объем жидкости, мл.
Наиболее удобен для определения относительной плотности плазмы (крови)
купросульфатный метод, 36 который можно использовать в любом лечебном
учреждении. Для этого каплю крови или плазмы погружают в серию стандартных
растворов медного купороса с плотностью 1016—1036, а цельной крови —
1036—1076. Каплю следует опускать с высоты 1 см над поверхностью раствора.
Если капля сразу же всплывает, то ее плотность меньше плотности раствора,
если тонет — больше, а если остается во взвешенном состоянии в течение 3—4
с, то плотность ее равна плотности раствора.
Постановка и учет реакции Шика. Реакция Шика указывает на наличие или
отсутствие необходимого уровня антитоксина в крови для защиты организма от
дифтерии. В настоящее время эта реакция применяется реже в связи с
внедрением в практику более чувствительных методов (РПГА).
Реакцию Шика проводят привитым против дифтерии детям с законченной
вакцинацией и не менее чем с одной ревакцинацией. В возрасте 13 лет и
старше реакцию можно ставить и с неизвестным прививочным анамнезом.
Состояние противодифтерийного иммунитета проверяют не ранее чем через 6
месяцев после последней ревакцинации и не ранее двух месяцев после
перенесенного острого заболевания.
Реакцию Шика ставят также в коллективах, неблагополучных по дифтерии,
вновь прибывшим детям, когда нет сведений о прививках. Детям с
отрицательной реакцией Шика дополнительные прививки не делают.
Дополнительные прививки независимо от иммунной прослойки в коллективе
проводят детям с положительной и сомнительной реакциями.
Результаты реакции Шика заносят в карту учета профилактических прививок
(ф. 63) с указанием даты постановки и проверки реакции, серии токсина и
института, изготовившего токсин.
Для постановки реакции Шика используют разведенный активный (негретый)
дифтерийный токсин. В 0,2 мл содержится одна Шик-доза.
Для постановки реакции Шика должны применяться однограммовые
(туберкулиновые), тщательно проверенные шприцы с точной градуировкой, не
пропускающие жидкость между стенками шприца и его поршнем.
Категорически воспрещается постановка реакции Шика в помещениях, где в
этот день проводилась ревакцинация против туберкулеза, а также использовать
шприцы, иглы и прочий инструментарий, применявшиеся при иммунизации против
туберкулеза.
Кожу на месте инъекции протирают ватой, смоченной 70 % этиловым
спиртом. Токсин (0,2 мл) вводят внутрикожно в среднюю часть ладонной
поверхности, как правило, левого предплечья. Введение производят медленно с
известным напряжением, характерным для внутрикожного введения жидкости.
Страницы: 1, 2, 3, 4
